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Épreuves de sensibilité du complexe Mycobacterium tuberculosis (CMTB) avec antituberculeux mineurs

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Accrédité par le Conseil canadien des normes au laboratoire numéro 594 - CAN-P-4E (ISO/IEC 17025)

Formulaires de demande

Détails de la référence

Description:

Déterminer la sensibilité de l'isolat clinique aux antituberculeux mineurs, à des concentrations critiques, (capréomycine, éthionamide, kanamycine, ofloxacine, PAS, rifabutine, amikacine, moxifloxacine, linézolide et streptomycine) à l'aide de la méthode de détection BACTEC MGIT 960.

Catégorie d'analyse:
Épreuve de sensibilité
Agent pathogène:
Mycobacterium tuberculosis
Infections et maladies:
  • Tuberculose (TB)
Spécimen:

La croissance sur milieu solide ou sous forme liquide • Pour la croissance sur milieu solide, on préfère les colonies isolées sur milieu en boîte de Pétri. La croissance du complexe Mycobacterium tuberculosis doit être visible et ne doit pas dépasser l'âge de 4 semaines. • Pour les cultures sous forme liquide, un volume minimum de 4 mL de culture en croissance active est souhaitable. • Les cultures ayant une croissance inadéquate, ou qui faisant l'objet d'une contamination, ne seront pas traitées et une nouvelle culture sera demandée.

Expédier toutes les cultures à température ambiante (NE PAS congeler) pour livraison le lendemain, et avant le mercredi de chaque semaine pour s'assurer qu'elles soient livrées au plus tard le vendredi.

Méthode de prélèvement:

S/O

Manipulation, entreposage et expédition des spécimens:

Expédier toutes les cultures à température ambiante (NE PAS congeler) pour livraison le lendemain, et avant le mercredi de chaque semaine pour s'assurer qu'elles soient livrées au plus tard le vendredi.

Transport des marchandises dangereuses:
L'expédition des prélèvements doit être confiée à une personne détenant un certificat de formation TMD, conformément au Règlement sur le TMD. Pour plus d'information sur la catégorisation des matières à des fins d'expédition, veuillez consulter la partie 2 de l'appendice 3 du règlement ou la section 3.6.2 du règlement de l'IATA sur les produits dangereux.
Critères relatifs aux patients:

Échantillons du complexe Mycobacterium tuberculosis résistants à au moins un antimicrobien de première intention. Les échantillons qui ne satisfont pas à ce critère peuvent être analysés lorsqu'ils sont accompagnés d'une justification clinique fournie par le médecin traitant.

Documents d'accompagnement:

Les réquisitions doivent être transmises par télécopieur ((204) 789-2036) à l'attention de Joyce Wolfe, Gestionnaire de programme, CNRM/LNM, avant de procéder à l'expédition des isolats au CNRM. La réquisition du CNRM doit être complétée, signée par le superviseur/ou la personne désignée du laboratoire expéditeur et inclure l'origine du spécimen, le sexe et la date de naissance du patient, l'histoire clinique et l'informations sur l'identifiant du laboratoire et la personne-ressource (requérant). Il est aussi nécessaire d'inclure des caractéristiques connues des isolats: la microscopie, la pigmentation, les caractéristiques des cultures, la vitesse et température de croissance, et l'identification.

Commentaires:

La demande d'analyse doit être accompagnée des résultats des tests de sensibilité de première ligne du CMTB. Les cultures peuvent également être rejetées si les documents nécessaires sont incomplets ou manquants.

Méthodes et interprétation des résultats:

En ce qui concerne les antituberculeux de deuxième intention (capréomycine, éthionamide, kanamycine, ofloxacine, PAS, rifabutine amikacine, moxifloxacine, linézolide et streptomycine), les épreuves sont menées aux concentrations critiques en utilisant la méthode de détection BACTEC MGIT 960.

Délai d'exécution:

Cela peut prendre une ou deux semaines avant d'obtenir une croissance en culture permettant la mise en place du test. Cela peut prolonger de deux semaines le délai d'exécution du test, soit 14 jours civils à partir de la mise en place du test. Le délai de 30 jours à partir du moment de la réception d'un échantillon comprend la durée du traitement de l'échantillon et la période de croissance en culture.

Coordonnées:
Téléphone: (204) 789-6038
Télécopieur: (204) 789-2036
Références:
  1. CLSI (2011) Susceptibility Testing of Mycobacteria, Nocardiae, and Other Aerobic Actinomycetes; Approved Standard. M24-A2. Vol. 31, No. 5
  2. Inderlied CB and Pfyffer GE. (2003) Susceptibility Test Methods: Mycobacteria, p. 1149 – 77. In Murray PR, Baron EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, and Yolken RH (ed). Manual of Clinical Microbiology, 8th ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C.
  3. Sabine Rüsch-Gerdes, Gaby E. Pfyffer, Manuel Casal, Maureen Chadwick, and Salman Siddiqi. 2006. Multicenter Laboratory Validation of the BACTEC MGIT 960 Technique for Testing Susceptibilities of Mycobacterium tuberculosis to Classical Second-Line Drugs and Newer Antimicrobials. J. Clin. Microbiol. 44: 688-692.
  4. Gaby E. Pfyffer, Donald A. Bonato, Adeleh Ebrahimzadeh, Wendy Gross, Jacqueline Hotaling, John Kornblum, Adalbert Laszlo, Glenn Roberts, Max Salfinger, Franziska Wittwer, and Salman Siddiqi. 1999. Multicenter Laboratory Validation of Susceptibility Testing of Mycobacterium tuberculosis against Classical Second-Line and Newer Antimicrobial Drugs by Using the Radiometric BACTEC 460 Technique and the Proportion Method with Solid Media. J. Clin. Microbiol. 37: 3179-3186.
  5. Annika Krüüner, Malcolm D. Yates, and Francis A. Drobniewski. 2006 Evaluation of MGIT 960-Based Antimicrobial Testing and Determination of Critical Concentrations of First- and Second-Line Antimicrobial Drugs with Drug-Resistant Clinical Strains of Mycobacterium tuberculosis. J. Clin. Microbiol. 44: 811-818
  6. M. K. Sharma, Thibert L., Chedore P., Shandro C., Jamieson F., Tyrrell G., Christianson S., Soualhine H., Wolfe J. (2011). A Canadian Multicentre Laboratory Study for Standardized Second-line Antimicrobial Susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis. J. Clin. Microbiol. 49(12): 4112-6.
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